Normas generales para antibioticoterapia



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NORMAS GENERALES PARA ANTIBIOTICOTERAPIA

a. EVITAR CAMBIAR ANTIBIOTICOS ANTES DE 48 HORAS DE COLOCADOS. PASADO ESTE TIEMPO CONSIDERAR FRACASO.

c. ANTE FUERTE SOSPECHA DE PSEUDOMONA O ACINETOBACTER EMPLEAR DOS ANTIBIÓTICOS CON DEMOSTRADO EFECTO.

d. EL TRATAMIENTO DURARA, MINIMO 7 DIAS.

e. ESTAFILOCOCEMIA, INFECCIONES POR ANAEROBIOS OBLIGARAN A ESQUEMAS

ANTIBIÓTICOS PROLONGADOS CUYA DURACIÓN SERA INDIVIDUALIZADA.



FACTORES DE RIESGO PARA INFECCIONES POR GÉRMENES RESISTENTES A ANTIBIÓTICOS:

1. Estancia Hospitalaria prolongada

2. Duración de la ventilación mecánica por más de 7 días.

3. Uso previo de antibioticos, especialmente de amplio espectro(Cefalosporinas de tercera generación, fluoroquinolonas, imipenem)

4. Presencia de catéteres, tubos, sondas.

PRINCIPIOS DE RESISTENCIA A ANTIBIÓTICOS:

1. El tiempo y el uso de una droga.

2. La resistencia es progresiva

3. Organismos resistentes a una droga se haran resistenten a otros antibioticos.

4. Una vez aparece la resistencia esta disminuirá muy lentamente.

5. El uso de antibioticos por una persona afecta a otras que esten en el servicio.



ESTRATEGIAS PARA PREVENIR LA RESISTENCIA

1. ANTIBIÓTICAS:

a. Uso de guías o protocolos

b. Restringir la formulación basada en consumo y perfiles de resistencia.

c. Evitar uso innecesario de antibióticos: Empírico, profiláctico, tratamientos prolongados.

d. Considerar estrategias que promuevan antibióticos heterogeneos: Rotación, cambios de esquemas, ciclar).

e. Emplear antibiogramas en UCI para guiar la selección del tratamiento antibiótico.

f. Uso de prácticas de prescripción efectivas: Selección apropiada basada en los patógenos locales y patrones de susceptibilidad.

2. NO ANTIBIÓTICAS:

a. Uso de técnicas asépticas para procedimientos invasivos

b. Optimizar las prácticas para el control de infecciones: Lavado de manos, desinfección de manos basada en alcohol, vigilancia de resistencia, educación médica.

c. Desinfección de instrumentos comúnmente usados: Equipos de terapia, por ejemplo.

d. Uso de medidas de aislamiento para pacientes infectados o colonizados con bacterias resistentes.

PRINCIPIOS DE USO DE ANTIBIÓTICOS EN UN HOSPITAL

1. TRATAMIENTO EMPÍRICO INDIVIDUALIZADO

a. Medir la inmunocompetencia del huésped.

b. Considerar la virulencia del germen.

c. Considerar riesgos/beneficios de tratamiento inmediato vs diferido.

d. Considerar riesgos/beneficios de antibioticos de amplio-espectro.

2. USO DE MICROBIOLOGÍA PARA ESTRECHAR EL TRATAMIENTO

a. Rapidamente obtener y revisar los cultivos y susceptibilidad.

b. Cambiar esquemas, según resultados de cultivos, a antibioticos de espectro reducido o de más bajo potencial de inducir resistencia.

c. Considerar el uso rutinario de cultivos de vigilancia para detectar la colonización con gérmenes potencialmente resistentes.

d. Tener datos de susceptibilidad antibiótica específica o una base de datos rutinaria.

3. OPTIMIZAR LA ADMINISTRACIÓN DE ANTIBIÓ-TICOS

a. Dosis terapéuticas ajustadas

b. Intervalo de aplicación

c. Duración del tratamiento

d. Monitoreo de los niveles de droga, cuando sea necesario.

e. Evitar interacciones de drogas

4. EVITAR EL ABUSO DE ANTIBIÓTICOS:

a. En profilaxis quirúrgica los antibióticos no deben durar más de 24 horas.

b. En los antibióticos empleados como terapia se debe dejar tiempo razonable(según aspectos del paciente o del germen) para evaluar respuesta clínica antes de declarar fracaso del antibiótico.

5. PRÁCTICAS DE MONITOREO INSTITUCIONAL

a. Restringir el uso de antibioticos poco efectivos.

b. Enfatizar el papel del estudio epidemiológico.

c. Enfoque multidisciplinario para el uso de antibioticos(Farmacólogo, Microbiologo, Infectologo, Jefe de almacen, Clínico).



PARÁMETROS PRÁCTICOS PARA LA EVALUACIÓN DE FIEBRE EN PACIENTES CRÍTICOS.

FIEBRE

RECOMENDACIONES

1. la temperatura es más exactamente medida por un transmisor intravascular o vesical , aunque la medición por un termómetro electrónico en boca, recto o conducto auditivo externo es aceptable en pacientes apropiados. La medida axilar no debería ser usada.

2. Algunos aparatos usados para medir temperatura deben ser mantenidos y calibrados apropiadamente, usando las guías de manufacturas como referencias.

3. Los aparatos deben ser usados de manera que no faciliten la expansión nosocomial de patógenos por el instrumentador o el operador.

4. La temperatura y los sitios de medición de la misma deben ser anotados en la historia.

5. Un nuevo episodio de temperatura > 38.3ºC es una señal razonable para una valoración clínica , pero no necesariamente una valoración de laboratorio o radiología para infección.

6. Las UCIs podrían reducir el costo operativo por eliminación de exámenes de laboratorio y radiología ordenados automáticamente(“de rutina”) para pacientes con nueva elevación de la temperatura. Por lo tanto estos exámenes deben ser ordenados basados en valoración clínica. Por el contrario una valoración de laboratorio para infección puede ser apropiada en pacientes eutérmicos o hipotérmicos dependiendo de la presentación clínica.



HEMOCULTIVOS.

RECOMENDACIONES

1. Obtener un par de cultivos después de iniciada la elevación de la temperatura,. obtener un segundo par de Hemocultivos dentro de las primeras 24 horas . Cultivos adicionales deben ser tomados cuando haya alta sospecha de bacteremia o fungemia.

2. Para pacientes sin catéter intravascular invasivo, obtener 2 cultivos sanguineos de sitios periféricos por venopunción separada después de apropiada desinfección de la piel.

3. Para preparación de la piel ,debe lavarse con yodopovidona por 2 minutos y con solución de yodo por 30 segundos. El alcohol, es una alternativa aceptable en pacientes alérgicos al yodo que no necesitan lavarse con mínimas cantidades de tiempo

4. El orificio de inyección de las botelllas de los cultivos sanguíneos deberían ser limpiados con alcohol antes de inyectar sangre hacia la botella para disminuir el riesgo de contaminación.

5. Si no se pueden obtener cultivos de 2 sitios periféricos, obtener una muestra periférica y una del más reciente catéter insertado si es posible. La obtención de cultivos a través de cateteres intravasculares produce información menos precisa que cultivos extraídos por venopunción.

6. Extraer 10 ml/ por hemocultivo.

7. Seguidas las primeras 24 horas, los hemocultivos deben ser ordenados basados en juicios clínicos más que en decisiones automáticas con cada aumento de temperatura.

CATÉTERES INTRAVASCULARES Y FIEBRE.

RECOMENDACIONES

1. Examinar al paciente por inflamación o pus en el sitio y al lo largo del túnel de canalización, y

evaluar signos de compromiso vascular y evidencia de fenómenos embólicos.

2. Material purulento obtenido por expresión debe realizarse Gram y cultivo.

3. Si hay evidencia de infección del túnel, fenómenos embólicos, compromiso vascular, o sepsis, el catéter debe ser removido y cultivado, nuevo catéter insertado en sitio diferente.

4. Dos hemocultivos deben ser extraídos periféricamenete por venopunción o si hay disponibilidad de cultivos cuantitativos, un hemocultivo debe ser tomado por venopunción y al menos un hemocultivo a través del catéter(retrocultivo). Cuando se sospeche de infecciones de catéteres venosos centrales de corto tiempo, no protegidos, generalmente es más efectivo reemplazar el catéter existente que extraer cultivos cuantitativos.

5. El cultivo de punta del catéter puede proveer información útil si se sospecha infección o colonización. Si se sospecha infección para Catéter de flotación de Arteria Pulmonar, tanto la punta del introductor como la punta del catéter deben ser cultivados.

6. No es necesario cultivar muestras de infusiones como parte de la evaluación de infecciones relacionadas a catéteres, a menos que haya fuerte evidencia epidemiológica.

7. En pacientes con fiebre sin foco claro: Después de 5 días de colocado el catéter, y si no hay signos de infección local, se recomienda considerar cambiar el catéter, utilizando el mismo acceso venoso, mediante guía.











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